VІ ЛІТНЯ ШКОЛА «МОЛЕКУЛЯРНА МІКРОБІОЛОГІЯ І БІОТЕХНОЛОГІЯ»
Одеса, 2011 

Одеський національний університет імені І.І. Мечникова, Інститут мікробіології і вірусології ім. Д.К. Заболотного НАН України, Товариство мікробіологів України та Спілка біологів і біотехнологів Одеси з 24.05.11 по 04.06.2011 проводять на базі ОНУ VІ Літню школу з молекулярної мікробіології і біотехнології. Запрошуємо до участі у школі молодих учених та аспірантів, а також тих спеціалістів, які хочуть підвищити рівень своїх знань з молекулярної біології ! Заняття ведуть наукові співробітники Інституту мікробіології і вірусології НАН України та співробітники кафедри мікробіології і вірусології ОНУ. Усі витрати на відрядження несе сторона, що направляє (дорога, проживання, добові). Вартість проживання за бажанням учасника  –  від 20 до 120 грн. за добу. Заїзд – 23 травня, початок занять  - 24 травня, від’їзд – 4 червня.

Заявки на участь у Літній школі просимо надсилати до 1 травня на електронну адресу  Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її..

Заняття проводяться на кафедрі мікробіології і вірусології біологічного факультету ОНУ за адресою Одеса, пров. Шампанський, 2

• ПРОГРАМА VI ЛІТНЬОЇ ШКОЛИ

  ПРОГРАМА VI ЛІТНЬОЇ ШКОЛИ „МОЛЕКУЛЯРНА МІКРОБІОЛОГІЯ І БІОТЕХНОЛОГІЯ” ОДЕСА, 24.05.11 -04.06.2011

  Організатори

  Одеський національний університет ім. І.І.Мечникова МОН України

  Інститут мікробіології і вірусології ім.Д.К.Заболотного НАН України

  Товариство мікробіологів України ім. С.М. Виноградського

  Спілка біологів і біотехнологів Одеси

  Теоретичний курс (30 год)

  Лекція  1

  Молекулярна генетика і молекулярна мікробіологія. Сучасні наукові концепції в молекулярній мікробіології. Біологічний метроном. Теорія нейтральної еволюції. Адаптивні мутації. Прокаріотно-еукаріотна дихотомія. Сучасні схеми класифікації прокаріотних і еукаріотних мікроорганізмів та вірусів. Домени життя.

  Лекція 2 і 3

  Первинна послідовність геномів. Методи встановлення первинної послідовності - сіквенс. Бактеріальна геноміка. Топологія цілісних бактеріальних геномів. Ортологи і паралоги. Кластери ортологічних генів (СОG). Концепція «найменшого» геному.

  Лекція  4

  Автономні генетичні елементи бактерій. Інсерційні послідовності, транспозони, системи рестрікції-модифікації, плазміди, бактеріофаги, острівки і острови патогенності. Ієрархія і мобільність автономних генетичних елементів. Автономні генетичні елементи і виникнення нових патогенних бактерій.

  Лекція  5

  Бактеріальні віруси. Сучасна класифікація бактеріофагів. Фаги з хвостовими відростками – порядок Caudovirales. Помірні і вірулентні бактеріофаги. Стратегія розвитку каудовірусів. Віруси бактерій і архебактерій. Фаги ентеробактерій і молочнокислих бактерій. Фаготерапія.

  Лекція  6

  Геноміка профагів і островів патогенності. Фагова лізогенна конверсія. Фагові токсини. Концепція «моронів». Острови патогенності і система секреції III типу.

  Лекція  7

  Дефектні бактеріофаги і бактеріоцини. Роль в міжбактеріальному антагонізмі. Перспективи використання бактеріоцинів – типування бактерій, біоконтроль бактеріальних популяцій і терапія раку.

  Лекція  8

  Геноміка плазмід. Плазмідні детермінанти патогенності. Вектори на основі плазмід. Молекулярна генетика плазміди pTi – С58 Agrobacteriumtumifaciens.Трансгенні рослини.

  Лекція  9

  Бактеріальні транспозони, ІS-елементи, інтегрони і генетичні касети. Формування множинної антибіотикостійкості у бактерій. Концепція внутрішньогеномних перебудов – геномний інженірінг.

  Лекція  10

  Екологія вірусівбактерій. Поширення і роль в глобальних обмінах речовини. Нові методи в екології бактеріофагів. Світовий океан і віріопланктон.

  Лекція 11

  Поняття про кластерний аналіз. Вимірювання спорідненості об'єктів. Проблема адекватності мір спорідненості та характеристики спорідненості організмів.

  Лекція 12

  Методи кластерного аналізу. Алгоритми прямої класифікації. Визначення кластерів. Алгоритми розрахунку кластерного аналізу, які застосовуються у біології. Критерії якості класифікації.

  Лекція 13

  Поняття нумеричної таксономії. Ієрархічні алгоритми. Застосування кластерного аналізу в нумеричній таксономії і філогенії.

  Практичний курс (90 год)

  Лабораторне заняття 1

  • Фаги порядку Caudovirales. Бактеріофаги Escherichiacoli:Т7 (родина Podoviridae), лямбда (Syphoviridae), Р1 і Т4 (Myoviridae). Класифікація. Морфотипи, організація віріонів. Віріонна ДНК.
  • Титрування фагів. Фагові бляшки (плаки), їх зв`язок з морфотипом, розміром віріонів та природою вірусів.
  • Препаративне одержання фагових часток. Метод злитного лізису чутливої культури. Концентрування фагових часток методом ПЕГ-преципітації (процедура Ямамото).
  • Виділення віріонної ДНК. Правила роботи з ДНК.
  • Рестрикційний аналіз. Ідентифікація бактеріальних вірусів за рестрикційними патернами їх геномів.

  Лабораторне заняття 2

  • Молекулярна генетика помірного коліфага Р1. Загальна і спеціалізована Р1-трансдукція генетичних маркерів. Плазмідний профаг. Фагова система рестрикції-модифікації ЕсоР.
  • Температурна індукція лізогена E. coli С600 [P1::Tn9 (Cmсts 100)].
  • Одержання та тестування Р1-лізогенів.
  • Плазмідні профілі лізогенів.
  • Обмеження продуктивного розвитку бактеріофага лямбда в клітинах   E. coli (Р1) за рахунок R/М системи ЕсоР1.
  • Лізогенізація фагом P1::Tn9 клітин Erwiniacarotovora.
  • Інкорпорація транспозона Tn9 в криптичну плазміду рСА25 E.carotovora.

  Лабораторне заняття 3

  • Плазмідні профілі бактерій. Форма і розмір позахромосомних кільцевих ДНК.
  • Особливості виділення плазмід у грамнегативних бактерій із природних екологічних ніш. Лужний метод Kado і Liu.
  • Ізоляція плазмідного профага Р1 та плазмід ентеробактерій F, RP4, pCA25, рСА25::Tn9. Електрофоретичне розділення плазмідної ДНК. Залежність електрофоретичної рухливості ДНК від її розміру.

  Лабораторне заняття 4

  • Іонообмінна та гель фільтраційна хроматографія віріонів та їх компонентів. Принципи рідинної хроматографії. Хроматографія високого та низького тиску. Сучасне обладнання для хроматографії. Виділення віріонів фага Р1 та Т7. Аналіз профілів елюції.

  Лабораторне заняття 5

  • Полімеразна ланцюгова реакція (ПЛР) – синтез певного фрагменту ДНК invitro. Різновиди ПЛР. ПЛР-діагностика бактеріального раку винограду:  виявлення послідовностей Ті-плазміди патогенних штамів Agrobacteriumtumefaciensі Agrobacteriumvitis. Метод “біо-ПЛР” у діагностиці хвороб рослин. Правила роботи у ПЛР-лабораторії.
  • Виділення плазмідної ДНК методом теплового лізису бактеріальних клітин. Реакційні суміші для проведення ПЛР.
  • Ампліфікація послідовностей Ті-плазміди штамів Agrobacteriumtumefaciensі Agrobacteriumvitis.
  • Електрофорез продуктів ПЛР.

  Лабораторне заняття 6

  • Застосування кластерного аналізу при побудові родинних зв'язків. Побудова філограм за допомогою комп'ютерних програм.
  • Множинне вирівнювання як попередній етап при аналізі родинних зв'язків.
  • Знайомство з основними пакетами програм, які застосовуються у філогенії (програми on-line).
  • Знайомство з програмою з аналізу первинної послідовності і побудова на її основі філограм (пакет MatLab).

  Укладач: зав. відділом молекулярної біології бактеріофагів ІМВ НАНУ, проф. кафедри мікробіології та вірусології ОНУ, д.б.н. Товкач Ф.І.